Praegu välja töötatud arvutisüsteemid, automaatselt juhtiv bakterite isoleerimine katseproovidest ja nende tundlikkuse määramine erinevate ravimite suhtes. Nende peamine eelis on bakterioloogilise labori personali vabastamine suurtest rutiinsetest uuringutest ja saadud tulemuste selge standardiseerimine.

Nende seadmete laialdane kasutamine kodumaises praktikas piirab nende maksumust. Ligipääsetavamate meetodite hulgas on kõige levinumad Alamar süsteem Ja E-test, mis ühendab jadalahjendusmeetodi ja kettameetodi eelised.

Uued meetodid bakterite kemoteraapia suhtes tundlikkuse määramiseks. Automaatsed süsteemid jadalahjendusmeetodi tulemuste registreerimiseks">

Automaatsed süsteemid jadalahjendusmeetodi tulemuste registreerimiseks(näiteks Baxter MicroScan AutoSCAN-4) - sisseehitatud fotomeetritega automatiseeritud inkubatsioonisüsteemid, mis registreerivad nefelomeetriliselt bakterite kasvu või selle puudumist 24 tundi pärast mikroorganismide viimist mikropaneelide süvenditesse. Toimimispõhimõte põhineb söötme optilise tiheduse erinevuse arvestamisel süvendites, kus esineb bakterite kasvu ja süvendites, kus kasvu ei toimu. Praegu on välja töötatud seadmed (näiteks VITEK), mis annavad tulemuse 4-10 tunni jooksul.

Alamar süsteem on süvenditega paneel, millest igaüks sisaldab filterpaberi kettaid, mis sisaldavad erinevas kontsentratsioonis antimikroobseid aineid ja on immutatud Alamar Blue indikaatoriga. Pärast bakterite süvendisse viimist muutub ketas siniseks ja nende edasise kasvuga muutub selle värvus roosaks. Ketaste süvenditesse paigutamise järjekord vastab ravimi kahekordsetele seerialahjendustele. Viimane sinise kettaga süvend, mis eelneb roosakate ketastega süvenditele, vastab ravimi MIC-le.

E-test[inglise keelest ellips, ellips, kuna tundlikkuse korral moodustub elliptiline kasvu inhibeerimise tsoon] - kettameetodi modifikatsioon, kuid viimase asemel kasutatakse erineva kontsentratsiooniga ravimitega immutatud filterpaberi ribasid, millest igaüks nendel tsoonidel on asjakohane märgistus. Ribad asetatakse agari pinnale. Kui bakterid on ravimi toime suhtes tundlikud, moodustub selle inhibeerivaid kontsentratsioone sisaldavate ribade ümber ellipsoidne tsoon. Selle vorm on tingitud mitme ravimi kontsentratsiooni korraga toimest. MIC vastab riba lõigule, kus seda ületab kasvu inhibeerimise tsooni piir.

E-test) on väljakujunenud meetod antibiootikumide tundlikkuse testimiseks üle maailma laborites. Seda kasutatakse laialdaselt resistentsuse uuringutes nii diagnostika- kui ka testimiskliinikutes. Test on kvantitatiivne määramismeetod MIC seenevastased ja antibakteriaalsed ravimid nakkusetekitajate, sealhulgas septiliste vastu, mis on eriti oluline raskelt haigete patsientide jaoks. Sellel meetodil on praegu üle 100 antibiootikumi, et testida mitmesuguseid aeroobseid baktereid ja nõudlikke organisme, nagu pneumokokid, Haemophilus influenzae, H. pylori, meningokokid, gonokokid, anaeroobid, seened ja mükobakterid. E-test võimaldab ratsionaalselt kasutada patsientidele parimaid tulemusi andvaid antibiootikume, samuti korrigeerida raviskeemi pärast ravimite empiirilist väljakirjutamist. Uuring on äärmiselt oluline antibiootikumide annuse määramisel topograafiliselt raskesti ligipääsetavate infektsioonikohtadega (nt endokardiit), mõnede haiglanakkuste, krooniliste infektsioonide ja immuunpuudulikkusega patsientidel.

E-test- ainulaadne patenteeritud tehnoloogia. Selle põhimõte seisneb selles, et plastikust testribale kantakse antibiootikumi järjestikused lahjendused väiksemast suuremani ja see võimaldab teil vähemalt 15 lahjenduse põhjal täpselt määrata bakteriaalsete ainete antimikroobse toime, nii veider kui ka mitte.

Katseprotseduur on lihtne: nakatatud agari pinnale asetatakse standardlahjendusest reagendiga riba. Pärast inkubeerimist loetakse tulemus lahjendusskaala abil, mis kantakse plaadile kasvu inhibeerimise tsooni ja testriba ristumiskohas ellipsi kujul.

E-test Sellel on resistentsuse jälgimisel mitmeid eeliseid, kuna see sisaldab kontsentratsioonigradienti, mis võib näidata vähimaidki muutusi tundlikkuses. Selle katse kontsentratsioonigradiendi laius katab kõikumised tundlikult mikroorganismide resistentsust ja määrab nii madala kui kõrge resistentsuse taseme.

See on tänapäeval kõige tundlikum test. E-test on makromeetod, mida saab hõlpsasti laboris tundlikkuse määramiseks rakendada. Üha uute infektsioonide avastamise ja mikroorganismide resistentsuse suurenemise ajastul antibakteriaalsete ravimite suhtes, E-test kogu maailmas tunnustatud kui peamist uuendust antimikroobse toime määramisel.

Biomerye kataloog 2013 lehekülgedel 33–36 sisaldab täielikku E-testide loendit (100 eset):

• Antibakteriaalne
• Seenevastane
• Antituberkuloos
• Mitme ravimiresistentsuse määramiseks

	Nimi	Kass. Ei.
	seenevastane	20306
		19364
		20307
		20457
		21040
		21053
		21055
		19361
		19362
	Fooliumipakendis on 30 ribaga vahukassett ja kuivatusaine; Hoida temperatuuril 2-8°C või kontrollitud ruumis. t°С	19363
	pakend on blister (plastist sektsioonpakend), mis koosneb 10 rakust, millest igaüks sisaldab 3 riba (antibakteriaalne). Säilitamine -20°C juures	19365
	Pakend on blister (plastist sektsioonpakend), mis koosneb 10 rakust, iga rakk sisaldab 3 riba (antibakteriaalne). Säilitamine -20°C juures	19366
	Pakend on blister (plastist sektsioonpakend), mis koosneb 10 rakust, millest igaüks sisaldab 3 riba (antibakteriaalne). Säilitamine -20°C juures	19359
	Fooliumipakendis on 30 ribaga vahukassett ja kuivatusaine; Hoida temperatuuril 2-8°C või kontrollitud ruumis. t°С	19371
	Fooliumipakendis on 30 ribaga vahukassett ja kuivatusaine; Hoida temperatuuril 2-8°C või kontrollitud ruumis. t°С	19375
	Fooliumipakendis on 30 ribaga vahukassett ja kuivatusaine; Hoida temperatuuril 2-8°C või kontrollitud ruumis. t°С	19374
	Fooliumipakendis on 30 ribaga vahukassett ja kuivatusaine; Hoida temperatuuril 2-8°C või kontrollitud ruumis. t°С	19373
	Pakend on blister (plastist sektsioonpakend), milles on 10 rakku, iga rakk sisaldab 3 riba (antibakteriaalne). Säilitamine -20°C juures	19372
	Pakend on blister (plastist sektsioonpakend), milles on 10 rakku, iga rakk sisaldab 3 riba (antibakteriaalne). Säilitamine -20°C juures	19370
	Fooliumipakendis on 30 ribaga vahukassett ja kuivatusaine; ladustamine 2-8°C või kontrollitavas ruumis. t°С	19360

Plaadi difusiooni meetod

Tiheda toitekeskkonna pinnale, mis on külvatud uuritava kultuuriga pidevale murule, ei asetata rohkem kui 6 antibiootikumidega immutatud ketast üksteisest vähemalt 2 cm kaugusele. Tulemused registreeritakse pärast 18–24-tunnist inkubeerimist termostaadis vastavalt antibiootikumidega ketaste ümbritseva kasvu puudumise tsooni läbimõõdule. Kasvu olemasolu ketta ümber näitab selle mikroobi tundlikkust antibiootikumi suhtes. Tulemuste tõlgendamiseks kasutatakse spetsiaalseid tabeleid.

Joonis 1. Tundlikkuse määramine

ketta difusioonimeetodit kasutavad mikroorganismid:

1 – mikroorganism tundlik antibiootikumile;

2 – mikroorganism mõõdukalt vastupidav antibiootikumile;

3 – mikroorganism stabiilne antibiootikumile.

E-testi meetod

Meetodi põhimõte. Mikroorganismi tundlikkuse määramine toimub sarnaselt ketta difusioonimeetodiga testimisele. Erinevus seisneb selles, et antibiootikumiketta asemel kasutatakse E-testi riba, mis sisaldab antibiootikumi kontsentratsioonide gradienti maksimumist miinimumini. Kasvu inhibeerimise ellipsoidse tsooni ja E-testi riba ristumiskohas saadakse minimaalse inhibeeriva kontsentratsiooni (MIC) väärtus.

Joonis 2. Mikroorganismide tundlikkuse määramine E-testide abil

Seerialahjendusmeetod puljongisöötmes

Valmistage katseklaasides, mis sisaldavad 1 ml Mueller-Hintoni puljongit, antibakteriaalse ravimi kahekordsed lahjendused, näiteks 100 µg/ml – 1., 50 µg/ml – 2., 25 µg/ml – 3., 12,5 µg/ml. – 4. jne. Seejärel lisatakse igasse katsutisse 0,1 ml testitud bakterisuspensiooni. Samal ajal manustatakse kasvukontrolli (1 ml Mueller-Hintoni puljongit ja 0,1 ml bakterisuspensiooni). Põllukultuure inkubeeritakse 37°C juures 18-24 tundi, seejärel märgitakse tulemused üles. Hägususe puudumine söötmes näitab bakterite kasvu aeglustumist ravimi antud kontsentratsiooni juuresolekul.

Joonis 3. MIC väärtuse määramine vedelas toitekeskkonnas lahjendamise teel

Minimaalne inhibeeriv kontsentratsioon (MIC) on antibiootikumi madalaim kontsentratsioon (μg/ml või mg/l), mis inhibeerib täielikult nähtavat bakterite kasvu in vitro.

2 Stafülokoki erinevate tüvede tundlikkuse määramine antibiootikumide suhtes standardse ketasmeetodi abil

Uuritav kultuur on tundlik ____________________________________________________________

mõõdukalt vastupidav _________________________________________________________________________________,

vastupidav ______________________________________________________________________________________.

3 Penitsilliini minimaalse inhibeeriva kontsentratsiooni (MIC) määramine seerialahjenduste meetodil.

Järeldus: Penitsilliini MIC uuritava tüve puhul on __________________________________________

Meetodi eelised:______________________________________________________________________________________

Meetodi puudused:______________________________________________________________________________________

4 Erinevat tüüpi bakterite antagonistlike mõjude tuvastamine ja registreerimine.

Antagonist mikroob ja sellega risti asetsevad testtüved inokuleeritakse MPA-ga plaadile piki läbimõõtu oleva triibuga. Tulemused registreeritakse üks päev pärast külvi. Antagonistliku toime olemasolu ja aste määratakse katsekultuuride kasvu inhibeerimise tsoonide suuruse järgi.

Ridakülv_____________________________________

Järeldus: suurim antagonistlik toime tuvastati katsetüvede puhul (täpsustage liik) _______________________________________________________________________________________________________

TUND nr 8

TEEMA: LÕPUTUND TEEMAL: „MIKROORGANISMIDE MIKROORGANISMIDE MIKROBIOLOOGIA, MORFOLOOGIA, FÜSIOLOOGIA JA GENEETIKA ARENGU AJALOOLISED ETAPPID“.

Tõeliste bakterite kuju ja suurus. Tõeliste bakterite sfääriliste, pulgakujuliste ja keerdunud vormide omadused.

Bakterite struktuur. Peamised erinevused prokarüootse raku ja eukarüootse raku vahel.

Grampositiivsete ja gramnegatiivsete bakterite rakusein.

Mikroskoopiliste preparaatide tüübid. Fikseeritud preparaatide valmistamise tehnika.

Mikroskoopia tehnika valgusmikroskoobis. Mikroorganismide morfoloogia uurimine elektronmikroskoobis.

Mikroobide toonilised omadused. Värvained. Fikseeritud preparaatide värvimise lihtsad meetodid.

Patogeensete prokarüootide klassifitseerimise põhimõtted (Burgee, 2001).

Kaitsevahendid mikroorganismides. Eosed, eoste tekkimise etapid ja tingimused, bioloogiline tähtsus.

Bakterikapslid, nende tähendus.

Lipud, nende struktuur. Cilia. Seksijoomine.

Keerulised värvimismeetodid. Grami, Ziehl-Neelseni, Burri-Ginsi, Neisseri värvimistehnikad.

Elusas olekus mikroorganismide uurimise meetodid. CON test. Meetodi põhimõte.

Spirochetes. Spiroheetide süstemaatiline asukoht ja morfoloogia. Ultrastruktuuri ja keemilise koostise tunnused. Uurimismeetodid.

Aktinomütseedid, morfoloogia, ultrastruktuur, keemiline koostis. Patogeensed liigid. Aktinomütseedide roll looduses ja meditsiinis. Tuvastamismeetodid.

Klamüüdia taksonoomia. Morfoloogia, struktuur, tuvastamismeetodid. Klamüüdia arengutsükkel.

Riketsia, morfoloogia, ultrastruktuur, keemiline koostis. Patogeensed liigid.

Mükoplasmad. Klassifikatsioon. Fülogenees. Avastamismeetodid.

Mikroobide defektsed vormid: protoplastid, sferoplastid, L-vormid.

Bakterite toitumine. Toitained on süsiniku ja lämmastiku allikad. Bakterite klassifikatsioon toitumise tüübi järgi Autotroofid ja kemoorganotroofid

Kasvutegurid ja nende allikad. Mineraalsete elementide allikad.

Toitainete ülekandmise meetodid ja mehhanismid läbi membraani.

Bakterite energiavajadus. Autotroofidest energia saamise viisid (fotosüntees, kemosüntees). Energia saamise allikad ja viisid kemoorganotroofides.

Bioloogilise oksüdatsiooni aeroobsed ja anaeroobsed tüübid bakterites. Aeroobsed, anaeroobsed, fakultatiivsed anaeroobsed ja mikroaerofiilsed bakterid. Anaeroobsete tingimuste loomise meetodid.

Bakterioloogilise (kultuurilise) uurimismeetodi eesmärgid, etapid, eelised ja puudused.

Mikroorganismide kasv ja paljunemine. Paljunemismeetodid. Binaarne (lihtne) lõhustumise mehhanism. Bakteripopulatsioonide paljunemine.

Bakterite kasvatamise põhimõtted ja meetodid. Mikroobide toitumisvajadused.

Toitekeskkond bakterite kasvatamiseks. Nõuded toitekeskkonnale. Toitekeskkonna klassifikatsioon.

Bakterite kasvatamise tingimused ja tehnikad. Toitekeskkonnale külvamise tehnika. Bakterite kasvu mustrid ja olemus tahkel ja vedelal toitainekeskkonnal.

Meetodid aeroobsete ja anaeroobsete bakterite puhaskultuuride eraldamiseks.

Isoleeritud kultuuride tuvastamiseks kasutatavate mikroorganismide omadused.

Bakteriaalsed ensüümid, klassifikatsioon. Mikroorganismide biokeemiliste omaduste uurimise meetodid. Biokeemilise aktiivsuse praktiline kasutamine bakterite tuvastamisel

Sahharolüütiliste omaduste määramine, Hissi söötme koostis; proteolüütiliste omaduste määramine, katalaasi ja oksüdaasi aktiivsuse määramine.

Bakterikultuuride automaatse tuvastamise seadmete (hemokultivaator, automaatanalüsaator) kasutamise põhimõte ja omadused.

Riketsia ja klamüüdia kasvatamise tunnused.

Bakteriofaagid (faagid). Avastamise ajalugu. Faagide morfoloogia, struktuuriomadused, keemiline koostis ja omadused.

Virulentsed faagid. Koostoime faasid bakterirakuga. Faagi ja raku vahelise interaktsiooni tulemused. Parasvöötme faagid. Profaag. Lüsogeneesi nähtus. Faagi konversioon.

Meetodid bakteriofaagide eraldamiseks ja tiitrimiseks tahkel ja vedelal toitainekeskkonnal Faagide kasutamine mikrobioloogias ja meditsiinis. Faagide diagnostika ja faagide tüpiseerimine.

Pärilikkus. Geneetilise aparaadi organiseerimine bakterites (nukleoidid, plasmiidid, On-järjestused, transposoonid).

Bakteri genoomi toimimise põhimõtted. Operoni korraldus. Genotüüp ja fenotüüp.

Plasmiidid, plasmiidide klassifikatsioon, struktuur ja omadused. R-plasmiid, struktuuri ja funktsiooni tunnused. Bakteriotsinogeensed plasmiidid.

Mikroobide varieeruvus. Bakterite muutused, tähtsus, peamised ilmingud ja omadused (mittepärilik olemus, kohanemisvõime, otseste ja vastupidiste muutuste kõrge sagedus, paljud indutseerivad tegurid).

Genotüübi varieeruvus. Mutatsioonid ja nende klassifikatsioon. Mutageenid. Mutatsioonide fenotüübilised ilmingud. Mutantide saatus. Dissotsiatsioon bakterites. Valiku mõju. Genoomikahjustuste parandamise süsteem.

Rekombinatsiooni varieeruvus. Kombineeritud genoomide moodustumise mehhanismid. Individuaalsete omaduste muutumise sagedus. Transformatsioon, transduktsioon, konjugatsioon.

Mikroobide geneetika alaste teadmiste praktiline tähendus. Geneetilise kaardistamise põhimõtted.

Geneetilise analüüsi meetodid (molekulaarne hübridisatsioon, polümeraasi ahelreaktsioon, blotanalüüs, sekveneerimine).

Geenitehnoloogia kontseptsioon ja selle meetodite kasutamine mikrobioloogias ja biotehnoloogias. Geneetiliselt muundatud vaktsiinide ja tsütokiinide tootmine ja kasutamine.

Antimikroobsed meetmed. Keskkonnategurite mõju mikroobidele. Füüsikaliste tegurite (temperatuur, kuivatamine, kiirgus, ultraheli, osmootne rõhk) toime. Keemiliste tegurite toime.

Steriliseerimise ja desinfitseerimise eesmärgid, meetodid, vahendid ja objektid meditsiinilises ja mikrobioloogilises praktikas. Desinfitseerimise kvaliteedikontroll. Steriliseerimise ja steriilsuse kontroll. Läbiviimise meetodid.

Antiseptiline. Definitsioon. Antiseptilised ained, nõuded, päritolu, omadused, rühmad, toimemehhanismid mikroobidele. Antiseptiliste ainete tüübid. Terapeutilised antiseptikumid. Ennetavad antiseptikumid.

Keemiaravi ravimid. Omadused. Keemiaravi ravimite peamised rühmad. Toimemehhanismid bakteritele. Selektiivsuse kontseptsioon ja tegevuse "eesmärgid".

Antibiootikumid. Definitsioon. Antibiootikumide tootjad. Sünteetilised ja poolsünteetilised antibiootikumid.

Peamised antibiootikumide rühmad keemilise struktuuri järgi. Beeta-laktaamantibiootikumid Tetratsükliinid. Aminoglükosiidid. Makroliidid ja asoliidid. Ansamütsiinid (rifampitsiinid). Levomütsetiin. Fluorokinoloonantibiootikumid. Linkomütsiin. Polümüksiinid. Glükopeptiidid

Antibiootikumide klassifikatsioon bakteriraku toimemehhanismi alusel.

Mikroorganismide resistentsuse mehhanismid antibakteriaalsete ravimite suhtes.

Meetodid bakterite tundlikkuse määramiseks antibiootikumide ja muude keemiaravi ravimite suhtes. Tundlikkuse seadistamise, salvestamise ja hindamise tehnika kettameetodil, E-test, seerialahjendused.

ÕPPETUND nr.9

TEEMA: BAKTERITE ÖKOLOOGIA. INFEKTSIOON. PATOGEENSED MIKROORGANISMID. MIKROOBSED TOKSIINID. BIOLOOGILINE (EKSPERIMENTAALNE) MEETOD.

KONTROLLLOEND

Inimkeha mikrofloora . Inimese normaalne (elanik) mikrofloora. Autohtoonne ja allohtoonne, parietaalne ja luminaalne mikrofloora. Normaalse mikrofloora teke ja areng. Normaalse mikrofloora funktsioonid: infektsioonivastane, metaboolne, immunobioloogiline, antitoksiline.

Düsmikrobiotsenoos (düsbakterioos), põhjused, liigid, korrigeerimise põhimõtted.

Infektsiooni mõiste. Definitsioon, üldised omadused. Nakkushaiguste ja mittenakkushaiguste erinevused.

Mikroorganismi roll nakkusprotsessis. Nakkuslik annus. Nakatumise meetodid. Sissepääsu värav. Patogeensus ja virulentsus. Patogeensuse ja virulentsuse geneetiline kontroll. Mikroobide virulentsust suurendavad ja vähendavad tegurid.

Patogeensuse tegurid. Virulentsuse määramise meetodid, ühikud. Kohustuslikud patogeensed ja tinglikult patogeensed mikroorganismid.

Mikroorganismide toksilisus ja toksilisus. Endotoksiinid, omadused, tootmine, kasutamine. Eksotoksiinid, omadused, tootmine, mõõtühikud. Eksotoksiinide liigid, toimemehhanism.

Makroorganismi roll nakkushaiguste tekkes ja kulgemises. Pärilikud tegurid. Keha anatoomiline ja füsioloogiline seisund. Elutingimuste roll nakkushaiguste tekkes ja kulgemises. Looduslikud tegurid. Sotsiaalsed tegurid.

Nakkusprotsesside klassifikatsioon raskusastme, patogeeni olemuse, nakkusallika, patogeeni edasikandumise viisi ja nakkuse mehhanismi ning levimuse järgi. Nakkusprotsesside klassifikatsioon mikroobide fookuse lokaliseerimise, kulgemise kestuse ja nakkuse sageduse järgi.

Nakkusprotsessi dünaamika, selle omadused.

Bioloogiline (eksperimentaalne) uurimismeetod, etapid, hindamine. Laboriloomad. Nakatumise meetodid.

LABORITÖÖD

1 Normaalse mikrofloora uuring.

A) Külv käte naha normaalse mikrofloora uurimiseks Endo söötmel ja vereagaril replika meetod.

Meetodi põhimõte: niisutage 1x1 cm steriilseid filterpaberi tükke Petri tassis steriilse soolalahusega. lahendus. Asetage steriilsete pintsettide abil uuritavale nahapinnale 0,5 minutiks paberitükk. Asetage paber 1 minutiks tiheda toitainekeskkonna pinnale (print). Eemaldage paber. Inkubeerige plaate trükistega 37 0 C juures 24-48 tundi.

C) Viige läbi mikrofloora inokuleerimise protokoll, valmistage preparaadid erinevat tüüpi kolooniatest, Grami värvimine, mikroskoobiga (demonstratsioonilistel inokulatsioonidel).

Mikrofloora inokuleerimise arvestamine:

Preparaatide mikroskoopia:

2 Kleepuvuse hindamineE. colitänu nende võimele adsorbeeruda punaste vereliblede pinnal

Meetodi põhimõte: Erütrotsüütide suspensioonile lisatakse mikroorganismide uuritav kultuur. Pärast inkubeerimist valmistatakse äigepreparaadid, värvitakse ja määratakse mikroskoobi all keskmine ühele punavereliblele adsorbeerunud bakterite arv.

Sel juhul kasutatakse punaseid vereliblesid vastuvõtliku mikroorganismi mudelrakuna.

3 Invasiivsuse ensüümide määramine stafülokokkides

1. Plasmokoagulaas

Meetodi põhimõte: Uuritav kultuur lisatakse katseklaasi, mis sisaldab tsitreeritud küüliku vereplasma. Pärast termostaadis inkubeerimist võetakse tulemust arvesse. Kui tulemus on positiivne, siis plasma hüübib (koaguleerub).

2.Fibrinolüsiin

Meetodi põhimõte: Uuritav kultuur lisatakse fibriiniga (punastest verelibledest pestud verehüübe) katseklaasi. Pärast termostaadis inkubeerimist võetakse tulemust arvesse. Kui tulemus on positiivne, tromb lahustub.

3.Hüaluronidaas

Meetodi põhimõte: katsekultuur lisatakse hüaluroonhappega (HA) katseklaasi. Pärast termostaadis inkubeerimist lisatakse reaktiiv, mis põhjustab HAA koagulatsiooni ja tulemust võetakse arvesse. Kui tulemus on positiivne (HAA lagunemise tõttu), siis tromb ei teki.

4.Letsitovitellaas (letsitinaas)

Meetodi põhimõte: eraldatud stafülokoki kultuurid inokuleeritakse munakollase-soolagariga, mis sisaldab 7,5% naatriumkloriidi ja munakollase suspensiooni. Positiivse tulemuse korral moodustub kanamuna rebudes sisalduva letsitiini lagunemise tõttu virulentsete stafülokokkide kolooniate ümber vikerkaarehalo.

Järeldus: (loetlege mõlema uuritud tüve virulentsusensüümid) ______________________________________________________________________________________________________

_____________________________________________________________________________________________

Bakteriaalsed toksiinid

Toksilisus __________________________________________________________________________________________

Toksilisus ______________________________________________________________________________________

Endotoksiin ___________________________________________________________________________________________

Endotoksiline šokk ________________________________________________________________________________

Endotoksiinide praktiline kasutamine:

Eksotoksiin ____________________________________________________________________________________________

Anatoksiin __________________________________________________________________________________________

Eksotoksiini ja toksoidi saamise skeem.

1.____________________________________________________________________________________________

2.____________________________________________________________________________________________

4.____________________________________________________________________________________________

Toksoidide praktiline kasutamine:

1.____________________________________________________________________________________________

2.____________________________________________________________________________________________

3.____________________________________________________________________________________________

Etest® on inertne plastriba, mis sisaldab antimikroobset ainet kontsentratsioonigradiendis minimaalsest maksimaalseni vahemikus, mis vastab 15 2-kordsele lahjendusele. Riba teisel küljel on vastavate minimaalsete inhibeerivate kontsentratsioonide (MIC) skaala. E-testid võimaldavad määrata antimikroobse ravimi minimaalse inhibeeriva kontsentratsiooni (kvantitatiivne difusioonimeetod).
. Inokuleerige plaat mikroorganismi kultuuriga.
. Asetage Etest® ribad (kuni 2 tk standardse 90 mm läbimõõduga tassi kohta või kuni 6 180 mm läbimõõduga tassi kohta).
. Kasvatamise käigus moodustub riba ümber ellipsoidne kasvu inhibeerimise tsoon, mis lõikub ribaga MIC-le vastavas punktis.
. E-teste on kasutatud üle 20 aasta.
. Rohkem kui 100 antimikroobset ravimit.
. Ribad mitme ravimiresistentsuse tuvastamiseks.
. Nõudlike mikroorganismide, streptokokkide, anaeroobsete mikroorganismide, seente (sh hallitusseente), mycobacterium tuberculosis jt tundlikkuse määramine.
. Mugav vabastamisvorm: 30 või 100 tk, blisterpakendis või vahukassetis.